一、常見實(shí)驗(yàn)異常與處理

擴(kuò)增抑制問題

· 現(xiàn)象：樣本擴(kuò)增曲線異常（如H07樣本抑制）。

· 處理：對(duì)樣本進(jìn)行稀釋（建議1:5或1:10），降低抑制物濃度后再復(fù)檢。

基線設(shè)置異常

· 現(xiàn)象：自動(dòng)基線設(shè)置不合理導(dǎo)致曲線偏移。

· 處理：手動(dòng)調(diào)整基線參數(shù)，將基線結(jié)束點(diǎn)設(shè)置為擴(kuò)增信號(hào)出現(xiàn)的前一個(gè)循環(huán)（如原26改為20）。

無Ct值或信號(hào)缺失

排查方向：

· 檢查PCR參數(shù)是否開啟熒光信號(hào)采集。

· 驗(yàn)證模板完整性（避免反復(fù)凍融或降解）及引物/探針活性（通過PAGE電泳檢測）。

· 排除設(shè)備休眠或電源干擾導(dǎo)致的中斷。

異常擴(kuò)增曲線

· 斜直線型曲線：檢查分液均勻性（確保反應(yīng)管液面一致）及反應(yīng)管氣密性（避免蒸發(fā)）。

· 末尾起跳曲線：

· 若陰性對(duì)照出現(xiàn)，提示污染風(fēng)險(xiǎn)（需徹底清潔操作臺(tái)及耗材）。

· 若復(fù)檢后仍存在，可能是低濃度樣本的非特異性擴(kuò)增。

二、關(guān)鍵操作規(guī)范

樣本處理

· 使用無菌耗材，避免引入外源DNA污染（如氣溶膠）。

· 高濃度樣本需預(yù)稀釋，減少抑制劑影響。

反應(yīng)體系配置

· 嚴(yán)格按比例配制Mix，避免酶活性不足或引物過量。

· 分液后檢查八連管液面高度一致性，減少孔間差異。

設(shè)備操作

· 上機(jī)前確認(rèn)反應(yīng)管密封性（按壓管蓋確保無縫隙）。

· 定期校準(zhǔn)熒光閾值（建議每月一次），避免基線漂移。

三、污染控制策略

分區(qū)操作

· 嚴(yán)格劃分試劑準(zhǔn)備區(qū)、樣本處理區(qū)、擴(kuò)增區(qū)，避免交叉污染。

· 使用帶濾芯槍頭及專用實(shí)驗(yàn)服。

清潔與滅活

· 實(shí)驗(yàn)后使用10%次氯酸鈉擦拭臺(tái)面，紫外照射30分鐘滅活殘留核酸。

· 定期更換移液器濾芯及密封圈。

四、實(shí)驗(yàn)記錄與復(fù)檢

· 記錄異常曲線特征及處理步驟，建立故障排查檔案。

· 對(duì)可疑結(jié)果執(zhí)行三次重復(fù)實(shí)驗(yàn)，排除偶然誤差。